Caracterização morfológica da cepa nativa de Rhizobium sp. obtido dos nódulos radiculares da cultura da ervilha (Pisum sativum L.) variedade rosa no cantão Espejo província de Carchi
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Publicado:
Dec 21, 2023
Palavras-chave:
Leguminosas, bactérias, conservação de microrganismos, simbiose.
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Resumo
Bactérias fixadoras de nitrogênio e leguminosas mantêm uma relação simbiótica que lhes permite obter nutrientes de forma eficiente, porém, há poucas informações sobre as características morfológicas e meio de conservação adequado das bactérias que nodulam no sistema radicular da variedade rosa de ervilha. (Pisum sativum L.). O objetivo desta pesquisa foi isolar e conservar cepas nativas de Rhizobium sp., Dos nódulos radiculares da cultura da ervilha, uma variedade rosa, para a qual o cultivo de ervilha forrageira foi estabelecido no cantão Espejo, província de Carchi. Para obter os nódulos no campo, foi realizada uma amostragem aleatória em zigue-zague de plantas jovens e vigorosas no estádio fenológico de floração. Foram retiradas 3 plantas em 5 pontos de amostragem, totalizando 15 plantas do lote. Os nódulos obtidos foram levados ao laboratório e plantados em Agar Manitol de Levedura com Azul de Bromotimol (YMA + AB). As cepas nativas de Rhizobium foram caracterizadas morfologicamente, onde foram observadas colônias de forma circular, convexa, com borda inteira e superfície lisa, de coloração branco-rosada cremosa e consistência gelatinosa, e por meio da coloração de Gram, foram relatados bacilos Gram negativos. realizaram a caracterização bioquímica, onde foi possível identificar a cepa nativa de Rhizobium, devido à sua reação positiva ao teste do Biureto, resistência a NaCl 2% e incapacidade de produzir H2S, características típicas de cepas de rizóbio. Além disso, um elemento essencial na identificação foi a falta de absorção do corante vermelho do Congo. A cepa isolada foi preservada em meio YMA + AB, sendo então incubada a 30°C por 5 dias e, sob condições assépticas, a cepa foi colocada em geladeira a temperatura de 4°C, para preservar a integridade genética do microrganismo .
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Como Citar
Alencastro PavónC., & Ayala ColimbaJ. I. (2023). Caracterização morfológica da cepa nativa de Rhizobium sp. obtido dos nódulos radiculares da cultura da ervilha (Pisum sativum L.) variedade rosa no cantão Espejo província de Carchi. AXIOMA, 1(29), 13-18. https://doi.org/10.26621/ra.v1i29.889
Seção
CIENCIAS NATURALES, MATEMÁTICAS Y ESTADÍSTICA
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Referências
Acosta A., Pardo M. (2019). Evaluación de técnicas de conservación para microorganismos de importancia en microbiología industrial en el Cepario de la Universidad de Santander. https://1library.co/document/zlmj976y-evaluacion-conservacion-microorganismos-importancia-microbiologia-industrial-universidad-santander.html
Arévalo, H. (2013). Evaluación de cinco variedades de arveja (Pisum sativum) bajo condiciones de invernadero en Tumbaco-Pichincha. Universidad San Francisco de Quito, Quito. https://repositorio.usfq.edu.ec/bitstream/23000/2419/1/106773.pdf
Berrada H., Nouioui I., Iraqui H., Ghachtouli N., Gtari M., & Fikri B. (2012). Phenotypic and genotypic characterizations of rhizobia isolated from root nodules of multiple legume species native of Fez, Morocco. African Journal of Microbiology Research 6:5314-5324. https://www.researchgate.net/publication/230814820_Phenotypic_and_genotypic_characterizations_of_rhizobia_isolated_from_root_nodules_of_multiple_legume_species_native_of_Fez_Morocco
Bernal, G., Suárez, A., Campaña, D., Jerez, M., Salvador, C., Graham, P. y Aguilar, M. (2004). Selección de cepas de Rhizobium adaptadas a condiciones de campo, y su uso como inoculantes de leguminosas de la Sierra y Costa Ecuatoriana. Ed. G. Bernal. Quito, EC. pp. 80. https://repositorio.iniap.gob.ec/handle/41000/3745
Castro, R. (2012). Respuesta a la inoculación con tres dosis de Rhizobium en el cultivo de arveja Pisum sativum L. variedad rogger temprana. Espejo - Carchi. Universidad Técnica del Norte, Ibarra. http://repositorio.utn.edu.ec/handle/123456789/1245
Constitución de la República del Ecuador. (2011). Capítulo tercero Art. 281. Soberanía Alimentaria. Quito; Asamblea Nacional del Ecuador. https://www.oas.org/juridico/pdfs/mesicic4_ecu_const.pdf
Chanway, C., Anand R. & Yang h. (2014). Nitrogen Fixation Outside and Inside Plant Tissues. Advances in Biological and Ecology of Nitrogen Fixation. T. Ohyama (ed.), InTechOpen. 2014. ISBN: 978-953-51-1216-7. https://www.intechopen.com/chapters/46070
Crespo L.& Paz, J. (2012). Identificación y caracterización de Rhizobium nativo para la producción de biofertilizante en la provincia de Santa Elena. La Libertad: Universidad Estatal Península de Santa Elena. https://repositorio.upse.edu.ec/xmlui/handle/46000/1870
Díaz, C. (2010). Aislamiento, caracterización y selección de rhizobia autóctonos que nodulan habichuela roja (Phaseolus vulgaris L.), en la República Dominicana. https://www.researchgate.net/publication/277792994_Aislamiento_caracterizacion_y_seleccion_de_rhizobia_autoctonos_que_nodulan_habichuela_roja_Phaseolus_vulgaris_L_en_la_Republica_Dominicana
Ferrera, R. & A. Alarcón. (2007). Microbiología agrícola. Primera edición. Editorial Trillas, México D.F. 225-236 p. https://catalogosiidca.csuca.org/Record/UES.157824
García, M., Pino J., Onderwater R., Wattiez R., Forte H., González J., & Vázquez, M. (2016). Señales producidas por Rhizobium leguminosarum en la interacción con frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Cultivos Tropicales, 37(2), 37-44. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0258-59362016000200005
Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Quito (Ecuador). Estación Experimental Santa Catalina. (2008). Muestreo de suelos para su análisis químico. https://repositorio.iniap.gob.ec/handle/41000/2025
Gato Y. (2010). Métodos de conservación y formulación de Trichoderma harziamun rifai Fitosanidad 14(3):189-195. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1562-30092010000300008
García M., Uruburu F. (2001) La conservación de cepas microbianas. Colección Microbiana de Cultivos Tipo (CECT). https://www.uv.es/cect2/87_Conservacion_cepas_microbianas
Gonzales, E. (2013). Estudio de la diversidad de cepas de Rhizobium provenientes de nódulos de tres variedades de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). https://repositorio.lamolina.edu.pe/handle/20.500.12996/3847?show=full
Guamán, F., Torres, R., Granda, K, & Nápoles, M. (2016). Aislamiento y caracterización de rizobios de Crotalaria sp. En el sur de Ecuador. Cultivos Tropicales, 37(1), 40-47. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362016000100006
Hernández, F., Ionel N., María C., Rosales G., Pedro R., Ramírez P., Juan F., & Ponte B., Sheyla. (2017). Tolerancia a la acidez de rizobios provenientes de nódulos de Canavalia ensiformis. Cultivos Tropicales, 38(3), 55-57. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362017000300001
Hernández, J., Cubillos H., & Milian, P. (2012). Aislamiento de cepas de Rhizobium spp., asociados a dos leguminosas forrajeras en el Centro Biotecnológico del Caribe Isolation of Rhizobium spp., associated two forage leguminous in the Caribbean Biotechnological Center. Revista Colombiana de Microbiología Tropical. Vol, 2(2). https://www.researchgate.net/publication/298069900_Aislamiento_de_cepas_de_Rhizobium_spp_asociados_a_dos_leguminosas_forrajeras_en_el_Centro_Biotecnologico_del_Caribe_Isolation_of_Rhizobium_spp_associated_two_forage_leguminous_in_the_Caribbean_Biotech
INEC (INSTITUTO NACIONAL DE ESTADISTICAS Y CENSOS EC). (2011) III Censo Nacional Agropecuario. Resultados Nacionales y Provinciales. Quito-Ecuador. https://n9.cl/91r7d
Jerez, M. (2004). Evaluación de Biotipos de Bradyrhizobium spp. en el cultivo del maní (Arachis hypogaea L.) en las provincias de Manabí y Loja. Tesis Ing. Agr. Quito, EC. UCE, Facultad de Ciencias Agrícolas. pp. 127. https://repositorio.una.edu.ni/3855/
Lindström K., Murwira A., Willems & Altier N. (2010). The biodiversity of beneficial microbe-host mutualism: the case of rhizobia. Research in Microbiology 161 (6) 453-463. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20685242/
López, M. (2002). El uso de marcadores moleculares de ADN en el estudio de la biodiversidad de rizobios nodulantes de leguminosas silvestres del Noroeste Argentino. Tesis doctoral. La Plata, AR. Universidad Nacional de la Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Departamento de Ciencias Biológicas. pp. 287. http://sedici.unlp.edu.ar/handle/10915/2577
López A., Rogelio L. (2017). Caracterización Morfológica y Bioquímica de Cepas de Rhizobium Colectadas en Frijol Común Silvestre y Domesticado. Rev. Fitotec. Mex. Vol. 40 (1): 73 – 81. https://www.redalyc.org/pdf/610/61050549010.pdf
Marquina M., González N., & Castro, Y. (2011). Caracterización fenotípica y genotípica de doce rizobios aislados de diversas regiones geográficas de Venezuela. Revista de Biología Tropical, 59(3), 1017-1036. https://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-77442011000300005
Montaño N., Sandoval A., Camargo S & Sánchez J. (2010). Los microorganismos: pequeños gigantes. Elementos 77(2010) 15-23. https://www.redalyc.org/pdf/294/29411989003.pdf
Patil S., Patil D., Patil M., Gaikwad P., Bhamburdekar S., & Patil P. (2012) Isolation, characterization and salt tolerance activity of Rhizobium sp. from root nodules of some legumes. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences 3:1005-1008. https://www.ijcmas.com/vol-3-5/S.M.Patil,%20et%20al.pdf
Pantoja, J., Villalta, V., Basantes, E., & Montalvo, A. (2015). La aplicación de urea en secano resulta en menor producción de arveja (Pisum sativum L.), Var. INIAP 436 Liliana, en Ambuela, Perucho, Pichincha, Ecuador. In Congreso de Ciencia y Tecnología ESPE (Vol. 10, No. 1, pp. 47-52). https://journal.espe.edu.ec/ojs/index.php/cienciaytecnologia/article/view/27
Pérez, A., T. Grisales and J. Fuentes. 2011. Determinación de morfotipos nativos de Rhizobium asociados a la leguminosa Teramnus volubilis Sw en fincas ganaderas en el municipio de Tolú en el departamento de Sucre. Revista Colombiana de Ciencia Animal 3(1): 62-89. https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/254
Plazas, C. (2007). Mejoramiento de un medio de cultivo para la producción de un inoculante con base en bacterias fosfato solubilizadoras. Carrera de Microbiología Industrial. Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá, D.C., Colombia. https://repository.agrosavia.co/handle/20.500.12324/21707
Prescott, L.M., Harley, J.P. y Klein, D.A. (2004). Microbiología. Traducida de la 5ta edición en inglés. Mac Graw Hill-Interamericana de España, S.A. pp. 1240. https://es.scribd.com/document/546325963/Microbiologia-Prescott-Harley-Klein-5ta-Edicion-1
Ribeiro, R., Martins T., Ormeño O., Delamuta J., Rogel M., Martínez R., & Hungria. (2015). Rhizobium ecuadorense sp. nov., an indigenous N2-fixing symbiont of the Ecuadorian common bean (Phaseolus vulgaris L.) genetic pool. International journal of systematic and evolutionary microbiology, 65 (9): 3162-3169, 2015. ISSN 1466-5034. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26297041/
Rojas, D., Garrido M., Bonilla R. (2009). Estandarización de un medio de cultivo complejo para la multiplicación de la cepa C50 de Rhizobium sp. Corpoica-Ciencia y Tecnología Agropecuaria. 10 (1), 70-80. https://revistacta.agrosavia.co/index.php/revista/article/view/131
Rodríguez M. M. N. (1993) Asociación Rhizobium-leguminosa. Manual de Agromicrobiología. Editorial Trillas. México. pp:11-51. https://acortar.link/MK5nmU
Ricillo, P., Munglia C., Brujin, F, Row, A., Booth, I., Aguilar, O. 2000. Glutathione is involved in environmental stress responses in Rhizobium tropici, including acid tolerance. Journal of Bacteriology 182: 1748-1753. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10692382/
Romero-Rojas, G.D. (2009). Caracterización y evaluación de la efectividad de la fijación de nitrógeno de cepas de “Rhizobium”, asociadas a pueraria (Pueraria phaseoloides), como cultivo cobertura de la palma aceitera (Elaeis guineensis jacq). Quito, EC. ESPE, IASA II. pp. 112. http://repositorio.espe.edu.ec/xmlui/handle/21000/2848
Saldaña, J. (2017). Aislamiento e identificación de cepas nativas de Rhizobium phaseoli de suelo de la Presa de la Juventud de Marín, Nuevo León. Rev. Iberoam. Prod. Académica y Gestión Educativa. 4(7):1-22. https://www.pag.org.mx/index.php/PAG/article/view/659
Secretaría Nacional de Planificación y Desarrollo 2017. Plan nacional para el buen vivir 2017. Quito: SENPLADES. https://observatorioplanificacion.cepal.org/es/planes/plan-nacional-de-desarrollo-2017-2021-toda-una-vida-de-ecuador
Wang, T., Martínez, J. y López, I. (2002). Rhizobium y su destacada simbiosis con las plantas. Eds. E. Martínez Romero y J.C. Martínez Romero. Laboratorio de Microbiología. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193250540005.pdf
Yadegari, M. & Rahmani H., (2010). Evaluation of bean (Phaseolus vulgaris) seeds’ inoculation with Rhizobium phaseoli and plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on yield and yield components. African Journal of Agricultural Research, 5 (9): 792-799, 2010. ISSN: 1991-637X. https://academicjournals.org/article/article1380790143_Yadegari%20and%20Rahmani.pdf
Arévalo, H. (2013). Evaluación de cinco variedades de arveja (Pisum sativum) bajo condiciones de invernadero en Tumbaco-Pichincha. Universidad San Francisco de Quito, Quito. https://repositorio.usfq.edu.ec/bitstream/23000/2419/1/106773.pdf
Berrada H., Nouioui I., Iraqui H., Ghachtouli N., Gtari M., & Fikri B. (2012). Phenotypic and genotypic characterizations of rhizobia isolated from root nodules of multiple legume species native of Fez, Morocco. African Journal of Microbiology Research 6:5314-5324. https://www.researchgate.net/publication/230814820_Phenotypic_and_genotypic_characterizations_of_rhizobia_isolated_from_root_nodules_of_multiple_legume_species_native_of_Fez_Morocco
Bernal, G., Suárez, A., Campaña, D., Jerez, M., Salvador, C., Graham, P. y Aguilar, M. (2004). Selección de cepas de Rhizobium adaptadas a condiciones de campo, y su uso como inoculantes de leguminosas de la Sierra y Costa Ecuatoriana. Ed. G. Bernal. Quito, EC. pp. 80. https://repositorio.iniap.gob.ec/handle/41000/3745
Castro, R. (2012). Respuesta a la inoculación con tres dosis de Rhizobium en el cultivo de arveja Pisum sativum L. variedad rogger temprana. Espejo - Carchi. Universidad Técnica del Norte, Ibarra. http://repositorio.utn.edu.ec/handle/123456789/1245
Constitución de la República del Ecuador. (2011). Capítulo tercero Art. 281. Soberanía Alimentaria. Quito; Asamblea Nacional del Ecuador. https://www.oas.org/juridico/pdfs/mesicic4_ecu_const.pdf
Chanway, C., Anand R. & Yang h. (2014). Nitrogen Fixation Outside and Inside Plant Tissues. Advances in Biological and Ecology of Nitrogen Fixation. T. Ohyama (ed.), InTechOpen. 2014. ISBN: 978-953-51-1216-7. https://www.intechopen.com/chapters/46070
Crespo L.& Paz, J. (2012). Identificación y caracterización de Rhizobium nativo para la producción de biofertilizante en la provincia de Santa Elena. La Libertad: Universidad Estatal Península de Santa Elena. https://repositorio.upse.edu.ec/xmlui/handle/46000/1870
Díaz, C. (2010). Aislamiento, caracterización y selección de rhizobia autóctonos que nodulan habichuela roja (Phaseolus vulgaris L.), en la República Dominicana. https://www.researchgate.net/publication/277792994_Aislamiento_caracterizacion_y_seleccion_de_rhizobia_autoctonos_que_nodulan_habichuela_roja_Phaseolus_vulgaris_L_en_la_Republica_Dominicana
Ferrera, R. & A. Alarcón. (2007). Microbiología agrícola. Primera edición. Editorial Trillas, México D.F. 225-236 p. https://catalogosiidca.csuca.org/Record/UES.157824
García, M., Pino J., Onderwater R., Wattiez R., Forte H., González J., & Vázquez, M. (2016). Señales producidas por Rhizobium leguminosarum en la interacción con frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Cultivos Tropicales, 37(2), 37-44. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0258-59362016000200005
Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Quito (Ecuador). Estación Experimental Santa Catalina. (2008). Muestreo de suelos para su análisis químico. https://repositorio.iniap.gob.ec/handle/41000/2025
Gato Y. (2010). Métodos de conservación y formulación de Trichoderma harziamun rifai Fitosanidad 14(3):189-195. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1562-30092010000300008
García M., Uruburu F. (2001) La conservación de cepas microbianas. Colección Microbiana de Cultivos Tipo (CECT). https://www.uv.es/cect2/87_Conservacion_cepas_microbianas
Gonzales, E. (2013). Estudio de la diversidad de cepas de Rhizobium provenientes de nódulos de tres variedades de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). https://repositorio.lamolina.edu.pe/handle/20.500.12996/3847?show=full
Guamán, F., Torres, R., Granda, K, & Nápoles, M. (2016). Aislamiento y caracterización de rizobios de Crotalaria sp. En el sur de Ecuador. Cultivos Tropicales, 37(1), 40-47. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362016000100006
Hernández, F., Ionel N., María C., Rosales G., Pedro R., Ramírez P., Juan F., & Ponte B., Sheyla. (2017). Tolerancia a la acidez de rizobios provenientes de nódulos de Canavalia ensiformis. Cultivos Tropicales, 38(3), 55-57. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362017000300001
Hernández, J., Cubillos H., & Milian, P. (2012). Aislamiento de cepas de Rhizobium spp., asociados a dos leguminosas forrajeras en el Centro Biotecnológico del Caribe Isolation of Rhizobium spp., associated two forage leguminous in the Caribbean Biotechnological Center. Revista Colombiana de Microbiología Tropical. Vol, 2(2). https://www.researchgate.net/publication/298069900_Aislamiento_de_cepas_de_Rhizobium_spp_asociados_a_dos_leguminosas_forrajeras_en_el_Centro_Biotecnologico_del_Caribe_Isolation_of_Rhizobium_spp_associated_two_forage_leguminous_in_the_Caribbean_Biotech
INEC (INSTITUTO NACIONAL DE ESTADISTICAS Y CENSOS EC). (2011) III Censo Nacional Agropecuario. Resultados Nacionales y Provinciales. Quito-Ecuador. https://n9.cl/91r7d
Jerez, M. (2004). Evaluación de Biotipos de Bradyrhizobium spp. en el cultivo del maní (Arachis hypogaea L.) en las provincias de Manabí y Loja. Tesis Ing. Agr. Quito, EC. UCE, Facultad de Ciencias Agrícolas. pp. 127. https://repositorio.una.edu.ni/3855/
Lindström K., Murwira A., Willems & Altier N. (2010). The biodiversity of beneficial microbe-host mutualism: the case of rhizobia. Research in Microbiology 161 (6) 453-463. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20685242/
López, M. (2002). El uso de marcadores moleculares de ADN en el estudio de la biodiversidad de rizobios nodulantes de leguminosas silvestres del Noroeste Argentino. Tesis doctoral. La Plata, AR. Universidad Nacional de la Plata. Facultad de Ciencias Exactas. Departamento de Ciencias Biológicas. pp. 287. http://sedici.unlp.edu.ar/handle/10915/2577
López A., Rogelio L. (2017). Caracterización Morfológica y Bioquímica de Cepas de Rhizobium Colectadas en Frijol Común Silvestre y Domesticado. Rev. Fitotec. Mex. Vol. 40 (1): 73 – 81. https://www.redalyc.org/pdf/610/61050549010.pdf
Marquina M., González N., & Castro, Y. (2011). Caracterización fenotípica y genotípica de doce rizobios aislados de diversas regiones geográficas de Venezuela. Revista de Biología Tropical, 59(3), 1017-1036. https://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-77442011000300005
Montaño N., Sandoval A., Camargo S & Sánchez J. (2010). Los microorganismos: pequeños gigantes. Elementos 77(2010) 15-23. https://www.redalyc.org/pdf/294/29411989003.pdf
Patil S., Patil D., Patil M., Gaikwad P., Bhamburdekar S., & Patil P. (2012) Isolation, characterization and salt tolerance activity of Rhizobium sp. from root nodules of some legumes. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences 3:1005-1008. https://www.ijcmas.com/vol-3-5/S.M.Patil,%20et%20al.pdf
Pantoja, J., Villalta, V., Basantes, E., & Montalvo, A. (2015). La aplicación de urea en secano resulta en menor producción de arveja (Pisum sativum L.), Var. INIAP 436 Liliana, en Ambuela, Perucho, Pichincha, Ecuador. In Congreso de Ciencia y Tecnología ESPE (Vol. 10, No. 1, pp. 47-52). https://journal.espe.edu.ec/ojs/index.php/cienciaytecnologia/article/view/27
Pérez, A., T. Grisales and J. Fuentes. 2011. Determinación de morfotipos nativos de Rhizobium asociados a la leguminosa Teramnus volubilis Sw en fincas ganaderas en el municipio de Tolú en el departamento de Sucre. Revista Colombiana de Ciencia Animal 3(1): 62-89. https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/254
Plazas, C. (2007). Mejoramiento de un medio de cultivo para la producción de un inoculante con base en bacterias fosfato solubilizadoras. Carrera de Microbiología Industrial. Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá, D.C., Colombia. https://repository.agrosavia.co/handle/20.500.12324/21707
Prescott, L.M., Harley, J.P. y Klein, D.A. (2004). Microbiología. Traducida de la 5ta edición en inglés. Mac Graw Hill-Interamericana de España, S.A. pp. 1240. https://es.scribd.com/document/546325963/Microbiologia-Prescott-Harley-Klein-5ta-Edicion-1
Ribeiro, R., Martins T., Ormeño O., Delamuta J., Rogel M., Martínez R., & Hungria. (2015). Rhizobium ecuadorense sp. nov., an indigenous N2-fixing symbiont of the Ecuadorian common bean (Phaseolus vulgaris L.) genetic pool. International journal of systematic and evolutionary microbiology, 65 (9): 3162-3169, 2015. ISSN 1466-5034. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26297041/
Rojas, D., Garrido M., Bonilla R. (2009). Estandarización de un medio de cultivo complejo para la multiplicación de la cepa C50 de Rhizobium sp. Corpoica-Ciencia y Tecnología Agropecuaria. 10 (1), 70-80. https://revistacta.agrosavia.co/index.php/revista/article/view/131
Rodríguez M. M. N. (1993) Asociación Rhizobium-leguminosa. Manual de Agromicrobiología. Editorial Trillas. México. pp:11-51. https://acortar.link/MK5nmU
Ricillo, P., Munglia C., Brujin, F, Row, A., Booth, I., Aguilar, O. 2000. Glutathione is involved in environmental stress responses in Rhizobium tropici, including acid tolerance. Journal of Bacteriology 182: 1748-1753. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10692382/
Romero-Rojas, G.D. (2009). Caracterización y evaluación de la efectividad de la fijación de nitrógeno de cepas de “Rhizobium”, asociadas a pueraria (Pueraria phaseoloides), como cultivo cobertura de la palma aceitera (Elaeis guineensis jacq). Quito, EC. ESPE, IASA II. pp. 112. http://repositorio.espe.edu.ec/xmlui/handle/21000/2848
Saldaña, J. (2017). Aislamiento e identificación de cepas nativas de Rhizobium phaseoli de suelo de la Presa de la Juventud de Marín, Nuevo León. Rev. Iberoam. Prod. Académica y Gestión Educativa. 4(7):1-22. https://www.pag.org.mx/index.php/PAG/article/view/659
Secretaría Nacional de Planificación y Desarrollo 2017. Plan nacional para el buen vivir 2017. Quito: SENPLADES. https://observatorioplanificacion.cepal.org/es/planes/plan-nacional-de-desarrollo-2017-2021-toda-una-vida-de-ecuador
Wang, T., Martínez, J. y López, I. (2002). Rhizobium y su destacada simbiosis con las plantas. Eds. E. Martínez Romero y J.C. Martínez Romero. Laboratorio de Microbiología. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193250540005.pdf
Yadegari, M. & Rahmani H., (2010). Evaluation of bean (Phaseolus vulgaris) seeds’ inoculation with Rhizobium phaseoli and plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on yield and yield components. African Journal of Agricultural Research, 5 (9): 792-799, 2010. ISSN: 1991-637X. https://academicjournals.org/article/article1380790143_Yadegari%20and%20Rahmani.pdf